qPCR實(shí)驗操作流程
Q-PCR實(shí)驗流程：
一、 ①實(shí)驗前準(zhǔn)備，每天早上到實(shí)驗室后，先把超凈工作臺的紫外燈打開15-20分鐘。②超凈臺前做實(shí)驗，需佩戴干凈的橡膠手套/一次性薄膜手套，RNA 抽提需帶口罩。③取EP管/槍頭時需用鑷子，不可以用使用過的手套直接取用。取完EP管/槍頭后，袋子及時封好。④橡膠手套須放入超凈臺照射紫外，實(shí)驗操 作過程中不得帶出超凈臺，移液器在一天工作結(jié)束后調(diào)至最大量程，并用75%乙醇清潔移液器，槍頭盒及超凈臺面。⑤實(shí)驗進(jìn)行的過程中或觀看實(shí)驗時，沒有帶口 罩不要在超凈臺前講話。
二、 總RNA抽提
1)細(xì)胞培養(yǎng)皿中細(xì)胞樣品用1*PBS洗兩次后，用1ml槍將PBS吸干凈，加入1ml Trizol (invitrogen)溶液，吹打混勻，并吸至1.5ml RNase free EP管中使細(xì)胞充分裂解，室溫靜置5min;
如使用組織樣品，則先用液氮充分研磨組織樣品，然后加入1ml Trizol (Invitrogen)溶液，混勻，室溫放置5min使其充分裂解;(管蓋與管壁都需標(biāo)記樣品名稱)
2)加入200μl氯仿，劇烈振蕩混勻30s，使水相和有機(jī)相充分接觸，室溫靜置3-5min;(離心時離心管按順序排放，離心完畢，離心管的順序也按順序排好，與第一步的順序一致)
3) 4℃下，14,000g離心15min，可見分為三層，RNA在上層水相，移至另一個新的RNase free EP管;(用20-200ul的槍吸取上清，吸上清時，槍頭應(yīng)沿著液面上層吸取上清，槍頭不可碰到、吸到中間層)
4)沉淀RNA：加入等體積異丙醇，輕柔地充分混勻(顛倒6-8次)(不應(yīng)用振蕩器混勻)，室溫靜置10min;
5)4℃下，14,000g離心10min，收集RNA沉淀(如離心后仍不見EP管底部有沉淀，應(yīng)將EP管放置在-80度冰箱過夜，繼續(xù)在4℃下，14,000g離心10min，收集RNA沉淀)，去上清;
6)用75%乙醇洗滌兩次(12,000g離心5min)(加入乙醇后只需輕輕顛倒EP管即可，不用振蕩器震蕩或槍頭吸打沉淀)，超凈臺風(fēng)干;沉淀不能過干或過濕，過干則不易溶解，過濕則乙醇?xì)埩簟?/p>
7)視沉淀量加入適量DEPC水(至少15ul)溶解沉淀。
三、去基因組
使用RNase-free的DNase ?(Promega)，按以下體系配置反應(yīng)液，37℃消化30min，65℃滅活10min。
RNA |
30 |
μl |
總體積 | 100 | μl |
然后按以下步驟操作：
1) 加入等體積的苯酚/氯仿，上下顛倒混勻，室溫放置5min后， 14,000rpm離心15min，取上清。
2) 加入等體積的氯仿，上下顛倒混勻，靜置分層后14,000rpm，離心15min，取上清。
3)加入等體積異丙醇，輕柔地充分混勻(顛倒6-8次)，-20℃靜置15min;
4)4℃下，14,000g離心15min，收集RNA沉淀，去上清;
5)用75%乙醇洗滌兩次(12,000g離心5min)，超凈臺風(fēng)干;
6)加入適量DEPC水(至少15ul)溶解沉淀。
四、總RNA純度和完整性檢測
1)純度檢測：取1μl RNA樣品50倍稀釋，在核酸蛋白檢測儀上測定OD值，OD260/OD280的比值大于1.8，說明制備的RNA較純，無蛋白質(zhì)污染。
2)總RNA完整性檢測：取RNA樣品1μl，1%瓊脂糖凝膠電泳80V×20min，EB染色10min，用凝膠成像系統(tǒng)觀察并拍照，總RNA的5s rRNA， 18s rRNA和28s rRNA條帶，三條條帶完整的話即可證明總RNA抽提比較完整。
五、逆轉(zhuǎn)錄
1、mRNA：
1) 在RNase free的PCR管中配置下列溶液：
Total RNA | 1.0 |
μg |
總體積 | 12 | μl |
2) 將上述溶液吹打均勻，置85℃保溫5min，使RNA變性。隨后立即冰上致冷， 以防止RNA復(fù)性；
3) 在該P(yáng)CR管中加入下列試劑(Promega)
oligo（dT） |
0.5 |
μl |
總體積 | 8.0 | μl |
4) 將上述20μl反應(yīng)溶液30℃保溫10min；
5) 42℃保溫50min；
6) 85℃保溫10min；
7) -20℃保存。
2、microRNA：
使用莖環(huán)逆轉(zhuǎn)錄法，原理如下圖：
1) 在去RNase的PCR管中配置以下溶液；
total RNA |
1.0
|
μg
|
總體積 | 12.5 | μl |
2)將上述溶液混勻，85℃孵育5min，以打開RNA二級結(jié)構(gòu)。隨后立即置于冰上，以防止RNA復(fù)性再次恢復(fù)二級結(jié)構(gòu)；
3) 在另一去RNase的PCR管中配置以下溶液：
10mM dNTP (promega) |
2.0 |
μl |
總體積 | 7.5 | μl |
4) 將3)溶液加入到1)溶液中，混勻后30℃保溫10min；
5) 42℃孵育50min；
6) 85℃孵育10min滅活逆轉(zhuǎn)錄酶。
六、定量PCR檢測
1、引物測試：
根據(jù)mRNA設(shè)計的引物正式實(shí)驗前需進(jìn)行qPCR測試其特異性和擴(kuò)增效率，具體反應(yīng)體系和反應(yīng)條件如正式實(shí)驗，每對引物需做模板水對照。
得到結(jié)果后，首先根據(jù)熔解曲線判斷引物特異性，選擇標(biāo)準(zhǔn)為：單峰且峰形偏窄、水對照無明顯引物二聚體熔解曲線峰。若設(shè)計的多對引物熔解曲線均顯示特異性良好，則應(yīng)對比各引物的擴(kuò)增曲線，優(yōu)先選擇Ct值小、擴(kuò)增效率高的引物進(jìn)行正式實(shí)驗。
2、確定上機(jī)內(nèi)容后，首先在記錄本上編排好上機(jī)的樣品排放順序。
(1)一個樣品的加樣盡可能安排在同一行；
(2)如正式實(shí)驗中三次重復(fù)不能安排在同一板上，則需把三次重復(fù)中的實(shí)驗分開，但同一次重復(fù)的實(shí)驗不能分開兩板。
3、正式實(shí)驗：
體系配制：
H2O 4ul
SYBR Green PCR Master Mix 10ul (TOYOBO)(使用前需振蕩均勻)
上游引物 0.5ul (10uM)
下游引物 0.5ul (10uM)
總體積 15ul
計算好實(shí)驗中需用多少份體系，則按具體量配置。體系分裝會有損失，一般多配0.5份--1份體系。
總的體系配好后，在振蕩器中振蕩均勻或用槍吸打均勻，然后15ul每管分裝至8連管中。
4、cDNA用滅菌純水稀釋適當(dāng)?shù)臐舛龋话銥?:20稀釋，如遇到基因表達(dá)低的樣品，則適當(dāng)降低稀釋比例至1:10或1:5。cDNA按一定順序排好 后，即可加至剛配好的反應(yīng)體系中。加樣完畢，蓋好八連管蓋，并在八連管蓋最上沿的邊上標(biāo)記好1-12的順序(不可將標(biāo)記寫在反應(yīng)管的蓋子上，八連管蓋避免 裸手觸摸中間透明的熒光采集區(qū)域，且保證每孔均蓋緊，否則影響重復(fù)性或可能出現(xiàn)熔解曲線峰漂移。)
5、把各排八連管放在掌上離心機(jī)上離心數(shù)秒。
七、上機(jī)：
7.1 先開電腦，進(jìn)入Windows 界面。接著打開PCR儀電源開關(guān)。
7.2 打開7500軟件，選擇“新建”，在“Template”下拉菜單中選擇“60”或“65”(普通基因檢測為“60”，MicroRNA檢測為“65”)。
7.3 打開樣品架，放入八連管，關(guān)上樣品架，并在軟件上選擇已放反應(yīng)管的孔位，剔除無反應(yīng)管的孔位。
7.4 點(diǎn)擊File菜單中Save，輸入要保存結(jié)果的文件名，命名為日期-上機(jī)時間-客戶名字簡寫，如100830-1008-WL表示8月30日10點(diǎn)08分魏立的實(shí)驗。
7.5 點(diǎn)擊Start鍵，開始運(yùn)行程序。
7.6 程序運(yùn)行完畢后，取出樣品架上的八連管，按順序關(guān)閉ABI PRISM 7500 SDS 軟件、PCR儀電源開關(guān)。
7.7 在7500軟件上標(biāo)記好每個反應(yīng)孔的樣品名稱及檢測基因的名稱，分類保存好結(jié)果文件。
反應(yīng)完成后，八連管應(yīng)裝到封口袋中，袋子上標(biāo)記好文件名，客戶的名字。(同一個客戶的三次重復(fù)實(shí)驗，則只需保存其中一次重復(fù)的反應(yīng)管即可，其余可丟棄)
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